神經節苷脂（GM）酶聯免疫分析（ELISA）
試劑盒使用說明書
本試劑盒僅供研究使用。
1 使用目的：
本試劑盒用于血清、血漿和尿樣及相關液體樣本中神經節苷脂（GM）殘留的定量檢測。
2 實驗原理
本試劑盒采用直接競爭ELISA方法，在微孔板包被有神經節苷脂（GM）偶聯抗原，加入神經節苷脂（GM）標準品或樣品，游離神經節苷脂（GM）與微孔條上預包被的神經節苷脂（GM）偶聯抗原互相競爭抗神經節苷脂（GM）抗體酶標記物，用TMB底物顯色，加入終止液后顏色由藍色變為黃色，用酶標儀在450nm波長下進行檢測，吸光值與樣品中神經節苷脂（GM）含量成反比，通過標準曲線計算樣品中神經節苷脂（GM）的含量。
3 試劑盒組成
3.1 預包被的神經節苷脂（GM）偶聯抗原的可拆酶標板：1塊（12孔×8條）。
3.2神經節苷脂（GM）標準品：6瓶（1ml/瓶），含量分別是： 0 ng/ml，0.1ng/ml，,0.3 ng/ml,0.9ng/ml，,2.7 ng/ml，8.1 ng/ml。
3.3抗神經節苷脂（GM）抗體酶結合物：1瓶（6ml）。
3.4顯色液A：1瓶（6ml）。
3.5顯色液B：1瓶（6ml）。
3.6終止液：1瓶（6ml），2M硫酸。
3.7樣本稀釋液：1瓶（6ml），用于樣品稀釋用。
3.8濃縮洗滌液：1瓶（20×，20ml），用于洗板。
3.9說明書一份。
4 需要而未提供的材料
4.1 設備
4.1.1波長450nm酶標儀。
4.1.2粉碎機。
4.1.3量筒。
4.1.4振蕩器。
4.1.5漏斗。
4.1.6Whatman No 1或相當的濾紙。
4.1.7微量移液器。
4.2 試劑
4.2.1去離子水或蒸餾水。
4.2.2 甲醇。
5 貯存
5.1 試劑盒貯存于2~8℃，切勿冷凍
5.2 未用完的微孔板應該密封干燥保存
6 注意事項
6.1 使用試劑盒前請仔細閱讀說明書。
6.2 不要使用過期試劑盒。
6.3 試劑盒使用前，將試劑恢復至室溫（25±2℃），建議至少回溫2小時。
6.4 標準品中含有神經節苷脂（GM），使用時應特別注意，操作時應帶手套。
6.5 終止液中含有硫酸，使用時防止灼傷皮膚及腐蝕衣物。
6.6 不同標準品、樣品所用吸頭不能混用，否則會影響試驗結果。
6.7 不同批號試劑盒中的試劑不得混用；不同標準品、樣品所用吸頭不得混用，否則會影響實驗結果。
6.8 稀釋樣本時必須用本試劑盒中的樣本稀釋液，否則會影響實驗結果
6.9 混合試劑時應避免起泡。
7 工作液準備
7.1神經節苷脂（GM）標準品溶液：0 ng/ml，0.1ng/ml，,0.3 ng/ml,0.9ng/ml，,2.7 ng/ml，8.1 ng/ml
7.2 濃縮洗滌液：用蒸餾水按1:20（1+19）稀釋備用
7.3 樣本稀釋液：已備用
7.3 顯色劑：已備用，避免光線直照
7.4 反應終止液：已備用
8 樣品處理：（樣品在提取過程中，要嚴格按說明書操作，提取過程中應準確稀釋，否則會出現結果不準確，樣品應當保存在陰涼避光之處及冷藏保存）
一般樣品處理
8.1取10g粉碎的樣品，加 20ml 70%甲醇溶液
8.2強力振蕩3分鐘
8.3用Whatman No 1濾紙過濾
8.4取100µl處理后的樣品，加入400µl樣本稀釋液
8.5取100μl稀釋液進行分析
動物組織前處理
8.6準確稱取1±0.05 g勻漿后的組織樣品到50 ml的聚苯乙烯離心管中；加入3ml乙腈--丙酮提取溶液，2000rpm劇烈震蕩20s后4000r/min以上離心5min
8.7取上清液0.8ml在50℃氮氣流下吹干
8.8加入3.2mL樣品稀釋液, 750rpm渦旋20s
8.9取100ml用于分析
飼料前處理方法
8.10準確稱取1±0.05 g粉碎飼料樣品到50 ml的聚苯乙烯離心管中；加入4ml乙腈，1ml丙酮，2000rpm劇烈震蕩20s后4000r/min以上離心3min
8.11取上清液0.7ml在50℃氮氣流下吹干
8.12加入2.8mL樣品稀釋液,渦旋20s，混勻后取100ml用于分析
牛奶前處理方法
8.13取1 ml牛奶樣品到5 ml聚苯乙烯離心管中；加入4ml樣品稀釋液，混勻后取100ml用于分析
奶粉前處理方法
8.14準確稱取0.3g奶粉樣品到7 ml的聚苯乙烯離心管中；加入2ml PBS溶液，2 ml正己烷，震蕩混勻
8.154000r/min以上離心5min，去除有機層和中間層，取下層溶液100ml到400ml 樣品稀釋液
8.16混勻后取100ml用于分析
9 酶免分析步驟
9.1 實驗須知
9.1.1 實驗開始前請將所有試劑于盒外充分恢復至室溫（25±2℃），時間約2小時。回溫至室溫（25±2℃）后再取出微孔條，多余的微孔條重新密封立即于2~8℃干燥保存
注：一定保證回溫充分，否則影響檢測的度和準確度。
9.1.2 使用后請立即將試劑放回2~8℃保存
9.1.3 請不要改變分析程序
9.1.4 請使用的微量移液器
9.1.5 操作一旦開始，請不要中斷任何程序
9.1.6 ELISA結果的可重復性極大程度的取決于操作程序，請嚴格按照要求操作
9.1.7 為避免交叉污染，每個標準品和樣品均應使用不同的吸頭加樣
9.1.8 加樣時請勿讓吸頭接觸微孔中的溶液或內表面
9.2 分析步驟
9.2.1 預先進行編號，標記B0、標準品和樣品的位置，推薦進行雙孔檢測
9.2.2 取所需數量的微孔（微孔條可拆），將多余板條重新密封并立即放回2~8℃保存
9.2.3 樣品稀釋液、濃縮洗滌液（20×）稀釋成工作液（蒸餾水或去離子水稀釋）
9.2.4 在B0孔中加入50µl0.0 ng/ml標準品溶液
9.2.5 在各標準孔中加入50μl的標準品溶液
9.2.6 在各樣品孔中加入50µl樣品溶液
9.2.7 在所有孔中加入50µl的抗黃曲霉素B1抗體酶結合物
9.2.8 輕輕晃動反應板幾秒鐘。
9.3 37℃溫浴30min （溫浴過程中不時輕拍反應板，可以減少雙孔誤差）
9.3.1 甩掉孔中液體，用洗液洗滌微孔板5次，zui后一次應在吸水紙上拍打以*除去孔中液體。
9.4 反應
9.4.1 洗滌程序完成后，立即用微量移液器在每個微孔中先加入50µl顯色液A，再加 50µl顯色液B；輕微晃動反應板使之*混勻
9.4.2 37℃溫浴10min
9.4.3 每孔中加入50µl終止液，混勻
9.4.4 在450nm下檢測吸光度，結果在5min內讀取。
10 結果計算
10.1定量分析
10.1.1所獲得的每個濃度標準溶液和樣本吸光度值的平均值（B）除以*個標準（0標準）的吸光度值（B0）再乘以100%，即百分吸光度值。
B—標準溶液或樣本溶液的平均吸光度值
B0—0 ng/ml標準溶液的平均吸光度值
10.1.2以神經節苷脂（GM）濃度的對數值為X軸，百分吸光度值為Y軸，繪制標準曲線圖。根據樣品百分吸光度值，可從曲線上得到對應點的橫坐標，即為神經節苷脂（GM）濃度的對數值，求得反對數即為測定液中神經節苷脂（GM）濃度C（ng/ml）
10.1.3由于樣品經過了預先稀釋，因此根據標準曲線所得出的樣品濃度一定要再乘以其稀釋倍數。
10.2 半定量測定
10.1.1目測半定量測定：首先選擇一個適當的標準液與樣品同運行，根據樣品與標準品吸光度值的高低比較，判斷樣品濃度值是小于還是大于標準值。
10.1.2儀器半定量測定：首先選擇一個適當的標準液與樣品同運行，根據樣品與標準品顏色深淺比較，判斷樣品濃度值是小于還是大于標準值。
